Jackson二抗用什么稀释（二抗一般稀释多少倍）

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1、wb 二抗融化，wb 抗体用5%的脱脂奶粉或者1%的BSA （千分之一的TBST的溶液 )配置，可以先让抗体和奶粉或者BSA 蛋白非特异结合，这样就不会与PVDF 膜上的蛋白结合了。

2、工作液根据需要稀释在5%奶粉里，再加入少量叠氮化钠（大约0.01%w/v），4度保存。

3、一抗是用BSA加叠氮钠稀释的，要回收，只要不长细菌就一直用。二抗是用脱脂奶粉稀释的，不回收，所以不行了。

4、只是需要稀释做实验的话，一般会用封闭液（BSA溶液，脱脂奶粉，注脱脂奶粉稀释后的抗体无法再次使用），或者是洗液（TBST或PBST）。抗体的浓度，一抗浓度建议参考抗体说明书选择稀释倍数，二抗浓度建议参考底物说明书配制。-Jackson二抗用什么稀释

1、抗体不用水稀释，一般用PBS稀释，稀释后马上就用，尽量不要存放。如果背景有些高，可以用PBS－T稀释也行。

2、抗体很快就消失。《二抗用水稀释》实验报告内容显示的结果是抗体很快就消失。二抗是以冻干或溶液状态提供的。

3、一抗和二抗是抗体，它们的浓度很高，如果不稀释，它们会影响实验结果的准确性。稀释可以提高抗体的活性，使它们更有效地与抗原结合，从而提高实验的准确性。稀释可以降低抗体的毒性，从而减少对实验样品的损害。-Jackson二抗用什么稀释

4、只要保证其pH等条件适合就好了。抗体说明书上都会有推荐的稀释倍数。上网查一下，有很多protocol。一般一比几百到一万都有，依抗体而定。可以4度过夜，这样染色效果好。二抗一般较便宜，一般1：50到1：200多。-Jackson二抗用什么稀释

5、有。一抗是针对抗原的抗体，二抗是针对一抗的抗体，一抗二抗不同倍数稀释有影响，稀释倍数过高或抗体品质差均可造成高背景。

Jackson二抗用什么稀释（二抗一般稀释多少倍）

1、食品营养成分可以在国家食品质量监督检验中心或者第三方检测公司检测。

2、去当地卫生局，或当地药检所。药品检测的目的在于防止不合格药品流入市场，保证药品的安全性。

3、当地疾控中心或者大一点的化工企业实验室，再或者去找当地的检测机构，成分分析不出具报告，只能告诉大概成分含量。以下为一些化妆品毒性的简易粗略测试方法，结果不一定十分准确，但起码让大家在挑选化妆品时做到有所辨别。-Jackson二抗用什么稀释

4、其他：植物提取物、油品、食品、药品、化妆品、建筑材料、香精香料、化学品、工业品、土壤、矿石矿物、煤炭等。中科检测具备成分分析检测资质，出具专业成分分析测试检测报告。

5、需要检测、分析、测试的用户，推荐了解微谱，大品牌更放心。【点击我和专业技术沟通】微谱，大型研究型检测机构。

elisa二抗用PBS稀释比较好。PBS稀释。当然最好用封闭液直接稀释，再加一点TritonX100效果好。培养液成分太多了。而且固定之后细胞都死了，用培养液没什么意义，只要保证其pH等条件适合就好了。-Jackson二抗用什么稀释

有区别，一般用PBS，PBST中的吐温有洗涤的效果。

抗原或抗体包被时所用的浓度较低.05%-0。

比较常用的是ELISA双抗体夹心法及ELISA间接法。(二) 操作步骤方法一用于检测未知抗原的双抗体夹心法：包被：用0.05M PH牰碳酸盐包被缓冲液将抗体稀释至蛋白质含量为1～10μg／ml。-Jackson二抗用什么稀释

方法一用于检测未知抗原的双抗体夹心法：包被：用0.05M PH6 碳酸盐包被缓冲液将抗体稀释至蛋白质含量为1～10μg/ml。在每个聚苯乙烯板的反应孔中加0.1ml，4℃过夜。

一抗孵育完成后洗膜是为了洗掉未和膜结合的抗体，而不是磷酸盐。只有洗干净非特异性结合在膜上的一抗，加二抗时才不会因非特异结合而呈现很重的背景。至于是使用PBS(T)还是TBS(T)，这要具体看你的二抗种类。-Jackson二抗用什么稀释

一般直接用PBS或者PBST就可以了，PBSM应该是封闭液吧，理论上也可以。但有没有差别，不好说，只有自己试过才知道，因为牛奶成份复杂，一般的指标是没有影响的，但不能保证所有指标都适用。